从零详解WGCNA分析

撰文|Will

WGCNA 一句话:把「一堆基因」按「表达相似性」打包成「模块」,再挑跟「表型」最亲的模块,挖里面的核心基因。

话不多说,直接上手。

一、准备数据

文件 格式 备注
表达矩阵 行为基因,列为样本 csv
分组信息 样本名分类, 0/1 1 是 treat,0 是 control
复制代码
library(WGCNA); library(tidyverse); library(limma)

exp <- read.csv("exp.csv", row.names = 1)        # 表达矩阵
group <- read.table("group.txt", header = T, row.names = 1)

dat <- t(exp[tail(order(apply(exp,1,mad)),5000),])  # 取 MAD 前 5000

原理:表达几乎不变(低 MAD)的基因,对"共表达"没贡献,还会把信号稀释掉。一刀切掉,既快又干净。只留下最活泼的 5000 个基因

二、去掉"捣乱"的样本 / 基因

复制代码
gsg <- goodSamplesGenes(dat)
if(!gsg$allOK) dat <- dat[gsg$goodSamples, gsg$goodGenes]

顺手画个树看看离群样本:

复制代码
plot(hclust(dist(dat)), main = "Sample tree")

原理:坏样本------整体表达谱跟大队人马差太远,会把整棵树带歪。坏基因------空值太多或全零,拉低相关性矩阵质量。这一步相当于质检,省得后面白跑。

三、挑软阈值(power)

复制代码
sft <- pickSoftThreshold(dat, powerVector = c(1:10, seq(12,30,2)))
power <- sft$powerEstimate   # 直接拿来用
plot(sft$fitIndices[,1], -sign(sft$fitIndices[,3])*sft$fitIndices[,2])

​​​​​​​

原理:原始相关系数是线性关系,经过幂次放大后,强相关更强,弱相关几乎归零。0.85 那条红线是"无标度"及格线,过了才承认"像生物网"。

四、建模块

  • power:上一步的

  • minModuleSize:模块最小基因数,默认 50,想多基因就调大

  • mergeCutHeight:模块合并阈值,默认 0.25,越小模块越多

    net <- blockwiseModules(
    dat, power = power,
    maxBlockSize = 5000,
    minModuleSize = 75,
    mergeCutHeight = 0.25,
    numericLabels = TRUE)

看一眼模块大小:

复制代码
table(net$colors)

把模块画出来(2 张图)​​​​​​​

复制代码
moduleColors <- labels2colors(net$colors)
plotDendroAndColors(net$dendrograms[[1]], moduleColors[net$blockGenes[[1]]])

原理:minModuleSize / mergeCutHeight:调大 → 模块少且肥大;调小 → 模块多且瘦小。按需求拧螺丝即可。

五、模块 vs 表型

一句话:算模块特征基因(ME)跟分组 0/1 的相关性。

复制代码
MEs <- net$MEs

colnames(MEs) <- paste0("ME", labels2colors(as.numeric(sub("ME","",colnames(MEs)))))
rownames(MEs) <- substr(rownames(MEs),1,12)

modTraitCor <- cor(MEs, group, use = "p")
modTraitP   <- corPvalueStudent(modTraitCor, nrow(group))

labeledHeatmap(
  Matrix = modTraitCor,
  textMatrix = paste0(signif(modTraitCor,2),"\n(",signif(modTraitP,1),")"),
  colors = colorRampPalette(c("blue","white","red"))(50))

原理:每个模块用一条"代表基因"------ME(第一主成分)。ME 与 0/1 分组算相关,颜色越深、P 越小,说明整个模块"集体"跟疾病绑得越紧。

六、核心基因怎么筛?

假设最相关的是 blue 模块:

复制代码
module <- "blue"
gene_exp <- dat[, net$blockGenes[[1]]]
ME <- MEs[, paste0("ME", module)]

# MM:基因与模块相关性
MM <- abs(cor(gene_exp, ME, use = "p"))
# GS:基因与表型相关性
GS <- abs(cor(gene_exp, group, use = "p"))

# 散点图看一眼
plot(MM, GS, pch = 19,
     xlab = "MM (blue)", ylab = "Gene significance",
     main = "MM vs GS")

# 取交集:MM & GS 双高
hub <- names(which(MM > 0.8 & GS > 0.5))

hub 就是核心基因,拿去富集、验证、做实验.

原理:MM:基因跟"群聊主题"的匹配度。GS:基因跟"疾病"本身的匹配度。两值都高 → 既是群核心,又跟疾病强相关。

七、导出 Cytoscape(可选)​​​​​​​

复制代码
TOM <- TOMsimilarityFromExpr(dat, power = power)
cyt <- exportNetworkToCytoscape(
  TOM[hub, hub],
  edgeFile = "edges.txt",
  nodeFile = "nodes.txt",
  weighted = TRUE, threshold = 0.2)

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