高致病性RNA病毒研究 | 并发修饰鉴定在SARS-CoV-2/IAV/RSV中的前沿应用

前言

SARS-CoV-2、流感病毒(IAV)、呼吸道合胞病毒(RSV)等高致病性RNA病毒,是全球公共卫生的重大挑战,其高突变率让传统靶向病毒的药物易出现耐药逃逸。

研究证实这类病毒的生命周期和免疫逃逸,本质是对宿主翻译后修饰(PTMs)系统的精准劫持,而病毒与宿主的博弈是多修饰协同、层级互作的"多维战争", 此前对PTM的研究却局限于单一修饰的孤立分析。直到并发修饰鉴定实现突破,才得以完整解析这场博弈,也为抗病毒研究打开全新格局。

今天我们就来系统梳理并发修饰鉴定的核心突破,及其在常见RNA病毒免疫逃逸机制研究中的重磅进展,探讨其如何改写抗病毒药物研发的底层逻辑。


01 并发修饰鉴定是什么?

并发修饰鉴定,是依托计算蛋白质组学与分析化学领域的双重技术革新,针对生物样本中同一蛋白分子上同步发生的多种PTM事件,实现全面、精准、系统性同步解析的技术体系。

该技术可同时覆盖样本中的经典生物学修饰、非经典化学衍生修饰,以及低丰度的修饰事件,完整还原蛋白多重修饰的串扰关系与层级互作网络。


02 并发修饰鉴定与传统修饰鉴定的区别

1. 传统修饰鉴定的核心痛点

病毒感染会引发宿主细胞氧化应激、代谢重塑和免疫信号级联反应,使样本中既有经典生物修饰,也有大量非经典化学衍生修饰,还常出现同一蛋白的多种低丰度并发修饰

过去主流的封闭式搜索策略(如Mascot、SEQUEST引擎),必须在数据检索前手动预设不超过10种预期修饰类型。当面对同一肽段上磷酸化、泛素化等多重并发修饰时,计算时间呈指数级增长,同时不可避免地遗漏大量未预设的非典型、新型修饰,最终只能看到PTM网络的零星碎片,无法还原完整的互作全貌。

2. 并发修饰鉴定的两大核心革新

并发修饰鉴定从算法底层与实验方法上实现了全面突破,形成了对传统技术的降维优势,核心体现在两大维度:

① 算法革新:开放式修饰搜索,解锁质谱"暗物质"

以MSFragger、Open-pFind为代表的开放式修饰搜索(Open Modification Search, OMS)算法,彻底重构了海量质谱数据的搜库底层逻辑:

▶ 通过设置 ±500 Da甚至更宽的前体离子质量容差,配合碎片离子超快索引、序列标签两步验证等创新机制,在不牺牲灵敏度、不显著增加搜索时长的前提下,实现对极宽质量偏移的穷举式匹配;

▶ 可直接与UNIMOD公共数据库(收录上千种已知修饰的元素组成与质量偏移)进行全库无缝比对,精准解析过去被视为"暗物质"的未匹配质谱谱图,让病毒介导的非预期、并发修饰事件无所遁形。

② 实验方法革新:连续富集策略,捕获低丰度修饰信号

除了算法升级,物理层面的样本前处理与富集方案,是并发修饰鉴定的另一核心支撑。目前主流的连续富集(Sequential Enrichment)策略 ,实现了同一样本中多种修饰的高效分离与检出:

▶ 先通过固定化金属离子亲和色谱(IMAC)或二氧化钛(TiO2)树脂,特异性富集磷酸化肽段;

▶ 再对流穿液中的非磷酸化肽段,利用K-ε-GG基序抗体进行免疫亲和富集,捕获泛素化、ISG化、NEDD化修饰肽段;

▶ 配合自动化液体处理平台,**可有效消除人为批次效应,**大幅提升极复杂病毒-宿主互作样本中低丰度修饰事件的检出率。


03 前沿速递:并发修饰鉴定在RNA病毒研究中的核心发现

并发修饰鉴定的成熟,彻底颠覆了我们对RNA病毒免疫逃逸机制的认知 ------ 它不再是单一蛋白、单一修饰的孤立事件,**而是病毒对宿主PTM网络的系统性、层级性重编程。**以下我们围绕三种最常见的高致病性RNA病毒,梳理近期的重磅研究发现。

1. SARS-CoV-2:破译修饰层级互作与全链路免疫逃逸机制

作为近年来研究最深入的RNA病毒,SARS-CoV-2的PTM互作机制,完全依托并发修饰鉴定才得以完整破译,其中最具代表性的就是核衣壳(N)蛋白的多重修饰串扰,以及ORF6蛋白的双重免疫逃逸策略。

① N蛋白:磷酸化启动的多重修饰层级攻防机制

N蛋白作为病毒基因组包装支架和宿主免疫调控节点,其功能由宿主酶介导的并发修饰网络精准调控:

磷酸化是核心启动开关: SRPK1、GSK3等激酶催化其丝氨酸/苏氨酸磷酸化,重塑RNA结合界面并调控液-液相分离,形成病毒复制工厂,既提升RNA合成效率,又逃避宿主早期免疫监视。

ISG化是宿主的精准反击: HERC5介导的**N蛋白4个关键位点ISG化依赖磷酸化启动,通过空间位阻破坏N蛋白寡聚化、瓦解复制工厂;**病毒则利用NSP3的PLpro结构域去ISG化实现反制。

SUMO化助力病毒毒力升级: TRIM28介导的**K65位点SUMO化与磷酸化协同,增强N蛋白寡聚化和相分离能力、抑制宿主免疫;**新冠变异株的R203K突变新增SUMO化位点,进一步提升免疫逃逸和致病性。

② ORF6蛋白:泛素化-磷酸化双通路阻断的免疫逃逸机制

61个氨基酸的ORF6蛋白同时操控宿主泛素化、磷酸化系统,双重阻断免疫信号:

▶ **阻断泛素化:**结合RIG-I、TRIM25,抑制RIG-I的K63泛素化并诱导TRIM28降解,掐断干扰素诱导上游信号;

▶ **阻断磷酸化:**阻塞核孔复合体阻止磷酸化的IRF3/STAT1入核,同时抑制其磷酸化,彻底阻断干扰素刺激基因转录。

2. 流感病毒IAV:全局SUMO化重塑与新型琥珀酰化调控机制

并发修饰鉴定刷新IAV研究认知,核心发现分为两大维度:

IAV感染引发宿主全局SUMO化重塑,病毒M1、NP、PB1/PB2等蛋白的SUMO化直接调控病毒转运、复制与组装;

▶ 高分辨率质谱的并发修饰鉴定,更首次发现NP蛋白K87位点琥珀酰化修饰,通过改变氨基酸电荷调控病毒核糖核蛋白复合物的聚合与解聚,揭示病毒利用代谢衍生修饰调控生命周期的新机制,为抗流感研究提供新靶点。

3. 呼吸道合胞病毒RSV:三重PTM劫持与免疫逃逸策略

并发修饰鉴定解析RSV对宿主PTM系统的三重劫持策略:

包膜糖基化免疫屏蔽: 包膜G/F蛋白的大量N/O - 糖基化,屏蔽病毒保守表位以逃避中和抗体,同时决定病毒的细胞受体亲和力与向性;

磷酸化调控病毒复制: N/P蛋白的多重磷酸化,是病毒复制场所包涵体形成的必要条件;

宿主糖基化信号通路劫持: RSV形成包涵体隔离宿主OGT与p38 MAPK激酶,**导致全局O-GlcNAc修饰水平骤降,**抑制宿主应激颗粒组装,摧毁宿主先天性抗病毒防线。

值得关注的是,**SARS-CoV-2、IAV、RSV三类不同科的RNA病毒,在劫持宿主PTM网络上呈现高度收敛的进化策略,均以磷酸化调控复制工厂形成、靶向泛素/SUMO化拮抗宿主天然免疫,**为跨病毒科的广谱抗病毒靶点开发奠定了核心理论基础。


04 从基础到临床:并发修饰鉴定在抗病毒研发中的发展

传统直接抗病毒药物(DAAs)靶向病毒自身酶类,但RNA病毒高突变率使其易产生耐药逃逸。而并发修饰鉴定揭示了病毒对宿主PTM酶网络的绝对依赖**,催生了宿主导向的抗病毒干预疗法(HDT)------ 通过精准干预被劫持的宿主PTM酶发挥作用,依托宿主基因的高稳定性,HDT拥有高抗突变屏障,更有望开发为广谱抗病毒药物。**

基于该技术的研究发现,多个HDT靶点已进入临床前/临床研究阶段:

1. **靶向宿主激酶抑制剂:**SRPK1/2抑制剂可切断SARS-CoV-2N蛋白磷酸化、抑制病毒复制工厂形成;GSK3抑制剂碳酸锂被证实能降低新冠重症风险,体现HDT"老药新用"的潜力。

2. **精准阻断促病毒修饰轴:**基于蛋白互作界面设计的干扰肽,可精准阻断TRIM28介导的N蛋白SUMO化,且不影响TRIM28正常功能,体外实验已证实其能恢复宿主天然抗病毒免疫。

3. **筛选广谱抗病毒靶点:**跨病毒科共同依赖的宿主因子成为研发核心,如靶向IAV、RSV共同依赖的MK2激酶的miRNA模拟物,可同时抑制两种病毒;PAD4抑制剂能缓解感染晚期的细胞因子风暴,与早期激酶抑制剂联用可构建多维抗呼吸道病毒防线。


05 并发修饰鉴定的未来前景如何?

高通量质谱与开放式搜索算法的融合,已将RNA病毒PTM研究从单一蛋白、修饰的静态观察,推向全局修饰互作网络的系统破译。

未来,该技术还可迎来三大突破性发展:

▶ **单细胞与空间多组学结合:**突破群体细胞平均信号局限,在真实感染组织微环境中,逐细胞、逐细胞器解析并发修饰的时空动态,破解PTM互作的时空异质性;

▶ **深度应用类器官感染模型:**依托贴合人体生理状态的模型,解析更真实的病毒-宿主PTM互作机制,大幅缩短基础研究向临床的转化周期;

▶ **快速响应新发突发病毒:**短时间内解析未知RNA病毒对宿主PTM网络的劫持机制,快速锁定HDT干预靶点,为应对病毒大流行提供先发制人的核心支撑。


结语

从单一修饰的零星发现,到多重修饰互作网络的完整破译,**并发修饰鉴定不仅彻底改变了我们对RNA病毒免疫逃逸机制的认知,更从底层改写了抗病毒药物研发的逻辑。**在人类与病毒的永恒博弈中,技术的每一次突破,都让我们离真相更近一步,也让我们面对未来的公共卫生挑战时,多了一份底气。


⬇️⬇️⬇️

[最成本可控、结果有保障的蛋白修饰研究策略

------目的蛋白修饰鉴定](https://link.zhihu.com/?target=https%3A//mp.weixin.qq.com/s/fmEcs5LnXfWbrUl0lG39Uw "最成本可控、结果有保障的蛋白修饰研究策略——目的蛋白修饰鉴定")

蛋白质翻译后修饰是机制研究的"深水区",天然修饰丰度往往很低需要经过富集才能高效研究,很多研究者认为研究修饰必然涉及成本较高的修饰基团富集,针对有明确通路或目的蛋白的场景,富集目的蛋白是一种成本更低、结果更可控的实验策略。

目的蛋白修饰鉴定分析:可支持UNIMOD收录1000+修饰类型及自定义修饰基团,一次检测可同时分析多种修饰类型。可基于同位点非修饰肽段为基准计算每个位点的修饰程度,比较不同刺激条件下修饰程度的变化。同时配备领先的高性能质谱和专研的修饰高灵敏度质谱检测方法,配备评估修饰检测效能的质控体系支持全程指导目的位点的检出。

**▶ 常见修饰鉴定:**支持UNIMOD收录1000+修饰类型,支持在一次检测中同时分析多种修饰类型。

**▶ 自定义修饰鉴定:**可自主定义修饰基团,支持自有化合物与药物靶点共价结合的结合位点发现。

**▶ OpenSearch未知修饰鉴定:**支持OpenSearch开放搜索,发现未知修饰类型及其位点鉴定。


参考资料

  1. Gu X, Zheng M, Gao Y, Lin S, Zhang X, Chen C, et al. Overview of host-directed antiviral targets for future research and drug development. Acta Pharm Sin B. 2025;15(4):1723-1751.

  2. Cakir M, Obernier K, Forget A, Krogan NJ. Target discovery for host-directed antiviral therapies: application of proteomics approaches. mSystems. 2021;6(5):e0038821.

  3. Yang J, Qu Y, Yuan Z, Lun Y, Kuang J, Shao T, et al. Targeting host dependency factors: a paradigm shift in antiviral strategy against RNA viruses. Int J Mol Sci. 2026;27:147.

  4. Ben Khlifa E, Campese A, Corsi A, Bombieri C, Romanelli MG, Valenti MT, et al. Post-translational modifications in respiratory virus infection: recent insights into the development of in vitro models. Int J Mol Sci. 2025;26:12174.

  5. Shao T, Pei Z, Wang Y, Zhao Y, Fan H, Pan J. The roles of post-translational modifications in the pathogenesis of RNA viruses: allies or adversaries? Front Microbiol. 2026;17:1768721.

  6. Yaron TM, Heaton BE, Levy TM, Johnson JL, Jordan TX, Cohen BM, et al. Host protein kinases required for SARS-CoV-2 nucleocapsid phosphorylation and viral replication. Sci Signal. 2022. doi:10.1126/scisignal.abm0808.

  7. Qu J, Liu M, Zhou C. Rewriting the viral script: post-translational modifications orchestrating SARS-CoV-2 pathogenesis and immune evasion. Front Microbiol. 2026;17:1748470.

  8. Schulze S, Igiraneza AB, Kösters M, Leufken J, Leidel SA, Garcia BA, et al. Enhancing open modification searches via a combined approach facilitated by Ursgal. J Proteome Res. 2021;20:1986-1996.

  9. Bittremieux W, Meysman P, Noble WS, Laukens K. Fast open modification spectral library searching through approximate nearest neighbor indexing. J Proteome Res. 2018;17(10):3463-3474.

相关推荐
谱度众合2 个月前
从「未知」到「已知」的靶点验证:DARTS技术实操指南与常见问题诊断
蛋白质组学·药物靶点·生物科研
百泰派克生物科技2 个月前
蛋白质测序技术:揭示生命奥秘的关键工具
生物学·生物信息学分析·蛋白质组学
百泰派克生物科技3 个月前
蛋白质从头测序原理解析
蛋白质组学·质谱·实验日常
谱度众合3 个月前
【蛋白互作研究】邻近标记PL-MS实验指南:如何精准获取目标蛋白的基因序列?
数据库·科技·蛋白质组学·药物靶点·生物科研
百泰派克生物科技3 个月前
串联质量标签(TMT)
人工智能·机器学习·蛋白质组学·蛋白质·质谱
谱度众合3 个月前
CETSA实验避坑手册:WB高背景、熔解曲线问题及 CETSA-MS(TPP)的进阶应用
科技·蛋白质组学·药物靶点·生物科研
谱度众合4 个月前
靶点验证四步走(三)|成药性评估:从 “功能有效” 到 “药物可用”,教你避开药物开发致命陷阱
蛋白质组学·药物靶点·生物科研
生信圆桌2 年前
生信是什么?生物信息学的基础概念与应用领域-生信圆桌
生物信息学·基因组学·蛋白质组学·转录组学